VIVE. Revista de Investigación en Salud
https://doi.org/10.33996/revistavive.v4i11.98
Volumen 4 | No.
11 | Mayo – agosto 2021
http://revistavive.org
ISSN: 2664 – 3243
ISSN-L: 2664 –
3243
pp. 345 - 357
Susceptibilidad de cepas de S. aureus aisladas en
superficies hospitalarias
Susceptibility of S. aureus strains isolated
on hospital surfaces
Suscetibilidade
de cepas de S.
aureus isoladas em superfícies hospitalares
Programa de Maestría en Diagnóstico de Laboratorio Clínico y
Molecular, Universidad Católica de Cuenca, Cuenca-Ecuador
Recibido 26 de marzo 2021 | Arbitrado y aceptado 14 deabril 2021 |
Publicado en 4 de mayo 2021
RESUMEN
Las
infecciones nosocomiales por Staphylococcus aureus tiene una alta
prevalencia, debido a que esta bacteria forma parte de la microbiota de la piel
del personal de salud y pacientes. Este microorganismo debido a su ubicuidad
está presente en superficies y fómites, convirtiéndose en vectores para la
trasmisión de infecciones. Objetivo. Describir el perfil de
susceptibilidad antibiótica de cepas de S. aureus aisladas en
superficies de un hospital de la ciudad de Cuenca. Materiales y métodos.
Se realizó un estudio con enfoque cuantitativo, de corte transversal,
descriptivo. Se recolectaron 200 muestras de diferentes superficies de áreas
hospitalarias, en las que se identificó S. aureus mediante la
amplificación de genes nucA Y femB. La susceptibilidad fenotípica a los
antibióticos se determinó por el método de Kirby Bauer. Resultados. Se
identificaron 6 cepas de S. aureus distribuidas de la siguiente manera:
2 cepas en el área de emergencia (33.33%) y 1 cepa (16.66%) en cada una de las
áreas de: vestidores, rayos X, ecografía y odontología. La totalidad de estos
aislados resultaron resistentes a: penicilina, oxacilina y amoxacilina;
sensibles a trimetoprim sulfametoxazol, rifampicina, tetraciclina,
cloranfenicol, vancomicina y linezolid. En el caso de la gentamicina se
encontró: 3 cepas sensibles, 1 con sensibilidad intermedia y 2 resistentes. Conclusión.
Se aislaron 6 cepas de S. aurues, en las cuales se pudo medir la
susceptibilidad a diferentes antibióticos.
Palabras
clave: S.
aureus; antibióticos; superficies hospitalarias
ABSTRACT
Nasocomial
infections by Staphylococcus aureus have a high prevalence, because this
bacterium is part of skin microbiota of health personnel and patients. This
microorganism for its ubiquity is present on surfaces and fomites becoming
vectors for the transmission of infecions. Objective. Describe the antibiotic
sisceptibility profile of S. aureus strains isolated from
surfaces of hospital the city of Cuenca. Materials and methods. Is a
quantitative cross sectional, descriptive, 200 samples were collected from
different surfaces of hospital areas, in which S. aureus was
identified through the amplification of nucA and femB genes. Phenotipic
susceptibility to antibiotics was determined by the Kirby Bauer method. Results.
6 strains of S. aureus were identified, distributes as follows: 2
strains in the emergency area (33.33%) and 1 (16.66%) in each of the areas:
dressing rooms X-rays, ultrasound and dentistry. All of these isolates were
resistant to: penicillin, oxacillin, and amoxacillin; sensitive to trimethoprim
sulfamethoxazole, rifampin, tetracycline vancomycin and linezolid. In the case
of gentamicin, it was found: 3 sensitive strains, 1 with intermediate
sensitivity and 2 resistant. Conclusion. Six strains of S. aureus
were isolates, in which the susceptibility to different antibiotics could be
measured.
Key
words:
S. aureus; antibiotics; hospital; surfaces
RESUMO
As infecções
nosocomiais por Staphylococcus aureus têm uma elevada prevalência,
devido ao facto desta bactéria fazer parte da microbiota cutânea do pessoal de
saúde e dos pacientes. Devido à sua ubiquidade, este microorganismo está
presente nas superfícies e fomenta, tornando-se um vector de transmissão de
infecções. Objectivo. Descrever o perfil de susceptibilidade aos
antibióticos das estirpes de S. aureus isoladas das superfícies
de um hospital na cidade de Cuenca. Materiais e métodos. Foi realizado
um estudo quantitativo, transversal e descritivo. Duzentas amostras foram
recolhidas em diferentes superfícies de áreas hospitalares, nas quais S.
aureus foi identificado por amplificação dos genes nucA e femB. A
susceptibilidade fenotípica aos antibióticos foi determinada pelo método de
Kirby Bauer. Resultados. Foram identificadas seis estirpes de S. aureus,
distribuídas da seguinte forma: duas estirpes na área de emergência (33,33%) e
uma estirpe (16,66%) em cada uma das seguintes áreas: camarins, raio-x,
ultra-som e odontologia. Todos estes isolados eram resistentes à penicilina,
oxacilina e amoxacilina; sensíveis ao trimetoprim sulfametoxazol, rifampicina,
tetraciclina, cloranfenicol, vancomicina e linezolida. No caso da gentamicina
encontramos: 3 estirpes sensíveis, 1 com sensibilidade intermédia e 2 resistentes.
Conclusão. 6 estirpes de S. aurues foram isoladas, nas quais a
susceptibilidade a diferentes antibióticos podia ser medida.
Palavras-chave: S. aureus;
antibióticos; superfícies hospitalares
INTRODUCCIÓN
l
género Staphylococcus agrupa una variedad de especies bacterianas, entre
las cuales destaca Staphylococcus aureus (S. aureus), cuya
importancia radica en su perfil de virulencia y resistencia antibiótica (1,2).
Frecuentemente se lo encuentra en una gran variedad de superficies, y a pesar
de formar parte de la microbiota en fosas nasales, mucosa orofaríngea y piel de
seres humanos (3),
es el principal patógeno aislado en infecciones de tejidos blandos, cutáneas,
osteoarticulares, endovasculares, implantes, cardiacos, etc (4).
S. aureus se encuentra dentro del grupo
de bacterias que forman parte del acrónimo "ESKAPE",
que son microorganismos que tienen la facilidad de inhibir los mecanismos de
acción de los antimicrobianos, esta habilidad de crear resistencia a múltiples
antimicrobianos lo convierte en un importante problema de salud publica (5).
La diversidad patogénica de esta bacteria está relacionada con su capacidad de
portar genes de resistencia, entre los que desatacan mecA, mecC, blaZ, vanA,
etc (6).
La era antibiótica comenzó a con el descubrimiento de las
propiedades antimicrobianas de la penicilina por Alexander Fleming. En 1941 se
extiende su uso como antibiótico de elección contra infecciones por diferentes
tipos de microorganismos (7).
Sin embargo, en 1944 ya se reportaron los primeros casos de S. aureus productoras de β-lactamasa con actividad penicilinasa codificada por el gen blaZ (8).
A raíz de esta problemática surgieron nuevos
antimicrobianos, como la meticilina que en 1959 se convirtió en la primera
opción terapéutica contra las cepas resistentes a penicilina. Lamentablemente
en 1961 se describieron los primeros casos de S. aureus resistente a la meticilina (SARM)
(9),
generado por el gen mecA que codifica para PBP2a (proteína
fijadora de penicilina 2 modificada) (10).
En este contexto, la vancomicina es el
antibiótico de primera línea para tratar infecciones producidas por SARM (11), y no fue hasta 1990
cuando se reportó por vez primera S. aureus con resistencia intermedia a
vancomicina (VISA, por sus siglas en inglés). Este hecho representó una alarma
para los sistemas de salud, ya que esta resistencia se relaciona con la
transferencia horizontal de los genes vanA, vanB y vanC (12,13).
Los nuevos fármacos para el tratamiento de cepas de S. aureus multirresistentes
con linezolid, tigeciclina y daptomicina (14,15).
Esta bacteria ubicua se ha logrado aislar de una gran
diversidad de superficies como piel y mucosas del personal de salud, salas de
cuidados intensivos, quirófanos, salas de emergencia, etc. Una de las
características de mayor importancia de S. aureus es su capacidad de
permanecer viable en superficies inertes desde algunas semanas hasta varios
meses, convirtiéndose en el principal microorganismo nosocomial (16,17).
Las infecciones relacionadas con la asistencia sanitaria
son las que se adquieren durante la estancia hospitalaria, las cuales se
contraen 48 horas después de ser hospitalizado, y pueden ser causada por la
flora intrahospitalaria, o por la microbiota del personal de salud o del mismo
paciente (18,19),
lo cual representa una complicación en las personas hospitalizadas pasando a
ser el principal problema de mobimortalidad (20).
En un artículo realizado en un hospital de Cali, los
investigadores registraron un 12.2% de S. aureus en ambientes
hospitalarios (22).
Por otra parte, una investigación realizada en quirófanos
y salas de cuidados intensivos de un hospital de Cuenca- Ecuador, reportó una
frecuencia del 6% de S. aureus y el 66.6% de resistencia a penicilina y
meticilina en las cepas aisladas (23).
En un hospital de Brasil la posibilidad de MRSA antes de
la limpieza fue 19% en 32 barandas de camas, luego de la desinfección de
estas superficies el crecimiento de MRSA fue de 12.5%, lo cual evidencia la
capacidad de esta bacteria a sobrevivir en diferentes superficies (21).
En investigaciones previas se evidencia la presencia de S.
aureus en superficies hospitalarias y su resistencia a diversos
antibióticos. Esto podría generar complicaciones en pacientes hospitalizadas,
alargando su estancia en la casa de salud y aumentado los costos invertidos
por el sistema de salud. Además la presencia de S. aureus en entornos
hospitalarios podría complicar la labor del personal de salud al presentarse
una infección nosocomial por esta bacteria.
Esta investigación tiene como objetivo principal
describir el perfil de susceptibilidad antibiótica de cepas de S. aureus
aisladas en las superficies de las áreas de un hospital de la ciudad de Cuenca.
En este contexto resulta relevante conocer la presencia
de esta bacteria y su susceptibilidad a diferentes antimicrobianos, en áreas
hospitalarias. Estos resultados serán de gran ayuda para establecer
medidas de prevención, como higiene de manos más frecuentes y optar por medidas
de desinfección en las áreas hospitalarias, con el
objetivo de prevenir que estas se conviertan en un
reservorio de S. aureus y otros microorganismos patógenos.
MATERIALES Y
MÉTODOS
l estudio realizado fue de tipo no experimental, descriptivo ya
que no se manipularon variables, el diseño de la investigación fue de corte transversal; se realizó un muestreo aleatorio
simple de las diferentes áreas como emergencia, laboratorio clínico, odontología,
hospitalización, quirófano, rayos x, vestidores, entre otros, en un hospital de
la ciudad de Cuenca. En total se recolectaron 200 muestras de diversas
superficies (manijas de las puertas interruptores teclados de las computadoras,
grifos de agua, instrumental, etc) de las áreas mencionadas.
Para la inclusión en este estudio se tomó en
consideración las superficies que están en mayor contacto con el personal que
labora en dicha institución y con los pacientes. Como criterios de exclusión
superficies que no se encuentran en mayor contacto con el personal de salud y
pacientes.
Las muestras fueron recolectadas con un hisopo de
algodón estéril humedecido con caldo soya tripticasa (CST). El procesamiento de
las muestras se ejecutó en el laboratorio de Genética y Biología Molecular del
Centro de Investigación, Innovación y Trasferencia de Tecnología (CIITT) de la
universidad Católica de Cuenca.
Procedimiento
Las muestras fueron incubadas por 48 horas a una temperatura de 37°C; para ser sembradas en agar manitol salado e incubarse
nuevamente con las mismas condiciones. Se procedió a la identificación fenotípica mediante la selección
de colonias fermentadoras de manitol a las cuales se les realizó la tinción de
Gram. La identificación molecular se realizó en las cepas de cocos Gram
positivos.
Para la extracción del ADN bacteriano de S.
aureus se utilizó el método de lisis alcalina formada por SDS
(dodecilsulfato sódico al 1%) en NAOH 0,25 N; para lo cual, con una asa
bacteriológica se tomó colonias de la siembra en agar manitol salado y se
suspendieron en tubos eppendorf con 1 ml de agua destilada estéril, se
homogenizó con la ayuda de un vortex , se centrifugó por 1 min a 3000 rpm
descartando el sobrenadante, se agregó 50 µl de la solución de lisis, se
homogenizó nuevamente, se llevó a 100 °C por 15 minutos, se añadieron 450 µl de
agua libre de nucleasas, se centrifugo por 20 segundos a 3000 rpm y el ADN
extraído se almacenó a -20 °C, hasta el momento de la amplificación.
La identificación genotípica de S.aureus se
realizó por medido de la reacción de la cadena de la polimerasa punto final
(PCR), de los genes nucA, femB, específicos para esta bacteria, se utilizó S. aureus ATCC® 11632 como control
positivo y Streptococcus pyogenes ATCC® 12344 como control
negativo. (Tabla 1).
Tabla 1. Iniciadores, de
producto amplificado y condiciones de amplificación de genes nucA,
femB.
|
Amplicones
|
Secuencia de los primers
5´-3´
|
Condiciones
para la corrida de la PCR
|
Referencia
|
|
nucA
270
pb
|
Forward: 5’ GCG ATT GAT GGT GAT ACG
GTT 3’
Reverse: 5’ AGC CAA GCC TTG ACG AAC
TAA AGC 3’
|
Desnaturalización
inicial 94°C por 5min, 10 ciclos de 94°C por 40 s, 68°C por 40 s, 72°C por
1min, seguido de 25 ciclos de 94°C por 1min, 58°C por 1min, 72°C por 2min y
una extensión final de 10min a 72°C.
|
Hamdan y et al., (24).
|
|
femB
651
pb
|
Forward: 5’ TTA CAG AGT TAA CTG TTA
CC 3’
Reverse:
5’ ATA CAA ATC CAG CAC GCT CT 3’
|
Desnaturalización inicial: 94 °C por 15 minutos , seguido de 35 ciclos de 94
°C por 45 segundos 50 °C por 45 segundos y 72
°C por 60 segundos con una extensión final de 72 °C por 5 minutos
|
Hamdan y et al., (24).
|
La separación de los productos de PCR se realizó por medio de
electroforesis horizontal en 50 ml de gel de agarosa al 1.5% con 2 ul de
bromulo de etilio por 60 min en una cámara BIOSECT GELCO UNIT con TAE buffer
1X, a 90 V, el resultado de la electroforesis se fotografió en un
transluminador de luz UV. (Figura 1).
Figura 1. Productos de PCR para el gen nucA (270pb) y femB (651
pb) de S. aureus aislados de las superficies hospitalarias, carril 1:
marcador de Peso Molecular (PM); carril 2 cepa control positivo; carriles 3
cepa control negativo; carriles 4, 5, 6, 7, 8,9 cepas positivas de nucA. Carril
12: ,marcador de PM, carriel 13: cepa control positivo, carril 14 cepa control
negativo, carriles 15,16,17,18,19,20 cepas positivas para femB.
La
valoración de la susceptibilidad de las cepas aisladas, se realizó mediante la
técnica Kirby-Bauer o disco difusión en agar Mueller Hinton (Difco-EEUU). Según
las recomendaciones del CLSI, para la cual se preparó una suspensión de
bacterias estandarizado con el patrón de McFarland 0.5, esta suspensión se
inoculo en placas de agar Muller Hinton sobre el cual se colocaron los discos
de penicilina (10ug), oxacilina (5ug), amoxicilina (10ug), gentamicina (10ug),
trimetoprim sulfametoxazol (25ug), rifampicina (5ug), tetraciclina (30ug),
cloranfenicol (30ug), vancomicina (30ug), linezolid (30ug )y fueron incubados a
35 °C por 24 horas, luego se realizó la lectura de los halos y se interpretó
de acuerdos a los criterios del CLSI: sensible, intermedio, resistente.
Procesamiento, análisis, resumen y presentación de la información
Para
el análisis estadístico se generó una base de datos en el programa IBM SPSS
Statistics, versión 25. El presente estudio se llevó a cabo mediante un
análisis descriptivo relacional; para el análisis descriptivo se realizó tablas
de frecuencia, posterior a esto se realizó un análisis relacional de Spearman.
Para presentar los resultados se utilizó tablas simples y gráficos de barras.
RESULTADOS Y DISCUSIÓN
n las
200 muestras obtenidas de la casa de salud se aisló seis cepas de S. aureus.
Estás fueron identificadas por medio de los genes nucA y femB.
Las áreas donde se evidenció presencia de S. aureus fueron: emergencia
(33.33%), odontología, vestidores, rayos X y ecografía (16.67%). (Ver Gráfico
1).
El proceso de identificación de S. aureus fue por medio
de los genes nucA y femB.
Grafico 1. Distribución de S.
aureus en las superficies de las diferentes áreas del hospital.
De
las seis cepas que fueron aisladas en las diferentes superficies, el 100%
presentaron resistentes a la penicilina, oxacilina y amoxicilina, con
sensibilidad a trimetoprim sulfametoxazol, rifampicina, tetraciclina,
cloranfenicol, vancomicina y linezolid. (Tabla 2).
Tabla 2. Susceptibilidad a
de S. aureus a los diferentes antibióticos.
|
ATB
Superficie
|
P
|
OX
|
AMX
|
CN
|
STX
|
RD
|
TE
|
C
|
VA
|
LNZ
|
|
BARANDILLA DE CAMILLA 1 (EMERGENCIA
)
|
R
|
R
|
R
|
R
|
S
|
S
|
S
|
S
|
S
|
S
|
|
BARANDILLA DE CAMILLA 2 (EMERGENCIA
)
|
R
|
R
|
R
|
R
|
S
|
S
|
S
|
S
|
S
|
S
|
|
CANDADOS DE CASILLEROS (VESTIDORES )
|
R
|
R
|
R
|
S
|
S
|
S
|
S
|
S
|
S
|
S
|
|
MOUSE DE COMPUTADORA (RAYOS X)
|
R
|
R
|
R
|
I
|
S
|
S
|
S
|
S
|
S
|
S
|
|
MANIJA DE PUERTA (ECOGRAFÍA)
|
R
|
R
|
R
|
S
|
S
|
S
|
S
|
S
|
S
|
S
|
|
MOUSE DE COMPUTADORA (ODONTOLOGÍA)
|
R
|
R
|
R
|
S
|
S
|
S
|
S
|
S
|
S
|
S
|
|
Penicilina: P
Oxacilina: OX
Amoxicilina: AMX
|
Gentamicina: CN
Trimetoprim sulfametoxazol: STX
Rifampicina: RD
|
Tetraciclina: TE
Cloranfenicol: C
|
Vancomicina: VA
Linezolid: LNZ
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
En
cuanto a la gentamicina, las cepas aisladas (2) en las barandas de las camillas
33,33% situadas en el área de emergencia presentan resistencia a este
antimicrobiano, por otra parte la cepa aislada (1) del mouse de computadora
(16.7%) ubicado en el área de rayos X manifiesta una resistencia intermedia.
Por último se aprecia que el 50% de las cepas (3) muestran sensibilidad hacia
este medicamento (Tabla 3).
Tabla 3. Susceptibilidad a
la gentamicina por S. aureus
|
Gentamicina 10ug
|
|
|
Frecuencia
|
Porcentaje
|
Porcentaje válido
|
Porcentaje acumulado
|
|
Válido
|
Resistente
|
2
|
33,3
|
33,3
|
33,3
|
|
Intermedio
|
1
|
16,7
|
16,7
|
50,0
|
|
Sensible
|
3
|
50,0
|
50,0
|
100,0
|
|
Total
|
6
|
100,0
|
100,0
|
|
Aplicado el estadístico de Spearman para calcular
la posible relación existente entre las variables estudiadas se evidencia que
las muestras tiene una relación positiva alta con respecto a la gentamicina
Rho= 0.802; p= > 0.055. A pesar de presentar una relación fuerte no
existen diferencias significativas. Por otra parte las superficies con respecto
al antimicrobiano presenta una relación positiva fuerte además, de la presencia
de diferencias significativas Rho= 0.926; p= 0.008. En cuanto a la relación entre
la muestra y el área presenta una relación fuerte positiva, al igual que
diferencias significativas Rho= 0.986; p= <
0.05 (Tabla 4).
Tabla 4. Relaciones entre
muestra, superficies y gentamicina.
|
|
Superficies
|
Area
|
Gentamicina10ug
|
|
Rho de Spearman
|
Muestra
|
Coeficiente de correlación
|
,829*
|
,986**
|
,802
|
|
Sig. (bilateral)
|
,042
|
,000
|
,055
|
|
N
|
6
|
6
|
6
|
|
Superficies
|
Coeficiente de correlación
|
1,000
|
,812*
|
,926**
|
|
Sig. (bilateral)
|
.
|
,050
|
,008
|
|
N
|
6
|
6
|
6
|
|
*. La correlación es significativa en el nivel 0,05 (bilateral).
**. La correlación es significativa en el nivel 0,01 (bilateral)
|
Discusión
En Ecuador según el reporte del
Instituto Nacional de Investigación en Salud
Publica la frecuencia de aislamiento es un 12% para S. aureus; dentro de
los antibióticos con mayor porcentaje de resistencia es la penicilina
seguido por la eritromicina desde el 2014 al 2017
en aislados de los servicios hospitalarios (25).
En este estudio se demuestra la presencia de S. aureus
en algunas superficies de esta casa de salud, lo cual demuestra la facilidad
que tiene esta bacteria de sobrevivir en diferentes superficies (26).
Comparando los resultados obtenidos en este estudio con
los de Cabrera (27)
realizada en Cali- Colombia en aislados de cepas S. aureus de diversas
superficies hospitalarias, en el cual se encontró un porcentaje mayor de cepas
aisladas de esta bacteria con resistencia a penicilina y oxacilina en menor
porcentaje a los resultados de este estudio, a diferencia de la resistencia
del 30% presentada a la tetraciclina; en este estudio las cepas aisladas de la
superficies son sensibles.
Por otro lado, Chávez et al., (22) de
la misma ciudad de Cali detectó el 12.2% de aislados de S. aureus de
167 muestras obtenidas en ambientes hospitalarios, con una resistencia
simultánea a gentamicina, tetraciclina, clorafenicol y oxacilina de 20%, dichos
resultado discrepan con los de esta investigación al haber resistencia al 100%
a oxacilina, gentamicina 33.3% y sensibilidad a tetraciclina y clorafenicol.
Otros
autores también reportan porcentajes superiores de esta bacteria en aislados
hospitalarios en comparación a los de este estudio, así como en la
investigación realizada por Rivera et al., (28) obtuvieron 17 cepas
de S. aureus en ambientes de cirugía y obstetricia, Mukhiya et al., (29). reportan una
prevalencia en el entorno hospitalario de 14.3% de S, aureus con 45.9%
de resistencia a la meticilina; por otro lado en un hospital en Nigeria reporta
una contaminación por este microbio con 54% (30).
En
contraste con los resultados de este estudio Glowacki et al., (31) aislaron S.
aureus 12% en superficies inanimadas de la área de emergencia con
sensibilidad a penicilina y oxacilina, de igual manera Prince et al., (32) determinaron la
trasmisión de esta bacteria entre el personal de salud, pacientes, el medio
ambiente en una UCI obteniendo 12.95% de resistencia a la meticilina en las
cepas aisladas de S. aureus, otro estudio en Venezuela reporta 15% de
este microorganismo aislado en las superficies del quirófano de un hospital
resultado contrarios al de este estudio ya que no existió crecimiento en las
superficies de esta área (33).
Un
estudio realizado en Libia demostró la resistencia de S. aureus aislado
de un ambiente hospitalario a diferentes antibióticos similares al de este
estudio como a penicilina y oxacilina al 100%; la resistencia a la gentamicina
25% es menor a comparación al de este estudio y susceptibilidad a la
vancomicina, rifampicina en su totalidad (34).
Por
otro lado, se evidencia la habilidad de S. aureus de colonizar
diferentes superficies como en barandas de camas en un 37.5% evidenciado por
Ferreira et
al., (21) porcentaje casi
igual a este estudio, en otro estudio en el cual se midió la contaminación
por MRSA en salas de un hospital en 2014 se encontró patrones de contaminación
menor al de este estudio en barandas de camillas, sin embargo un porcentaje
similar de MRSA al presente estudio en los colchones (35).
De la
misma manera se demostró la presencia de S. aureus en un 3% en las
manijas de puertas en un hospital de Ghana con un patrón de resistencia total a
penicilina lo cual concuerda con los resultados de este estudio, dichas cepas
aisladas también presentaron resistencia a tetraciclina y a trimetoprim
sulfametoxazo. (36).
CONCLUSIÓN
l bajo porcentaje de aislados de S. aureus en este estudio
puede deberse a que esta investigación se realizó en un hospital básico, y la
estancia hospitalaria es baja lo cual disminuye las posibilidades de trasmisión
de patógenos entre los pacientes y el personal de salud, no obstante es
importante mantener la normas de desinfección para evitar que las áreas de este
hospital se conviertan en reservorios para S. aureus y de otros
microorganismo patógenos.
En base a
los resultados obtenidos la mayoría de los aislados de S. aureus son
resistentes a las penicilinas empleadas en este estudio, por lo que es
recomendable mantener medidas de vigilancia epidemiológica de la resistencia
presentadas por las cepas aisladas en las diferentes superficies, con el
objetivo de controlar la diseminación de cepas multirresitentes principalmente
SARM, que es uno de los patógenos con importancia entre los procesos
infecciosos lo cual puede alargar el tiempo de estancia hospitalaria, generar
altos costos para el sistema de salud y comprometer la vida de los pacientes.
Se
recomienda que para próximos estudios realizar pruebas moleculares para genes
de resistencia como blaZ y MecA.
REFERENCIAS
BIBLIOGRÁFICAS
1. Diana
L, Ciuffo C, Musto H, Diana L, Ciuffo C, Musto H. Identificación y
caracterización de Staphylococcus resistentes a meticilina aislados de perros.
Veterinaria (Montevideo) [Internet]. 2019 [citado 12 de diciembre de
2020];55(212):45–51. Disponible en: http://www.scielo.edu.uy/scielo.php?script=sci_abstract&pid=S1688-48092019000200045&lng=es&nrm=iso&tlng=es
2. Portillo ME, del Pozo JL. Infecciones por estafilococo.
Medicine - Programa de Formación Médica Continuada Acreditado [Internet]. 2018
[citado 12 de diciembre de 2020];12(49):2890–4. Disponible en:
http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0304541218300210
3. Vega MD la, Vergiu CC. Presencia de Staphylococcus aureus
después del lavado de {manos quirúrgico en estudiantes de odontología. Revista
KIRU [Internet]. 2019 [citado 9 de diciembre de 2020];16(2). Disponible en:
https://www.aulavirtualusmp.pe/ojs/index.php/Rev-Kiru0/article/view/1556
4. Togneri AM, Podestá LB, Pérez MP, Santiso GM. Estudio de las
infecciones por Staphylococcus aureus en un hospital general de agudos
(2002-2013). Rev Argent Microbiol [Internet]. 2017 [citado 12 de diciembre de
2020];49(1):24–31. Disponible en:
http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S032575411630092X
5. Founou RC, Founou LL, Essack SY. Extended spectrum
beta-lactamase mediated resistance in carriage and clinical gram-negative
ESKAPE bacteria: a comparative study between a district and tertiary hospital
in South Africa. Antimicrob Resist Infect Control [Internet]. 2018 [citado 12 de
diciembre de 2020];7(1):134. Disponible en:
https://doi.org/10.1186/s13756-018-0423-0
6. Andrade C, Orellana P. Frecuencia y susceptibilidad a
penicilina y meticilina de aislamientos ambientales de Staphylococcus aureus en
un hospital de Cuenca. Kasmera [Internet]. 2019 [citado 10 de diciembre de
2020];47(2):123–30. Disponible en:
https://produccioncientificaluz.org/index.php/kasmera/article/view/27470
7. Sierra Benítez EM, León Pérez MQ, Sierra Benítez EM, León
Pérez MQ. Terapia antibacteriana: origen y evolución en el tiempo. Rev Med
Electrón [Internet]. 2019 [citado 17 de diciembre de 2020];41(5):1300–8.
Disponible en:
http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_abstract&pid=S1684-18242019000501300&lng=es&nrm=iso&tlng=es
8. García A, Martínez C, Juárez RI, Téllez R, Paredes MA,
Herrera M del R, et al. Methicillin resistance and biofilm production in clinical isolates
of Staphylococcus aureus and coagulase-negative Staphylococcus in México. Biomédica
[Internet]. 2019 [citado 13 de diciembre de 2020];39(3):513–23. Disponible en:
http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_abstract&pid=S0120-41572019000300513&lng=en&nrm=iso&tlng=es
9. Lee AS, de Lencastre H, Garau J, Kluytmans J, Malhotra-Kumar
S, Peschel A, et al. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus. Nat Rev Dis Primers
[Internet]. 2018 [citado 6 de diciembre de 2020];4(1):1–23. Disponible en:
https://www.nature.com/articles/nrdp201833
10. Aguayo-Reyes A, Quezada-Aguiluz M, Mella S, Riedel G,
Opazo-Capurro A, Bello-Toledo H, et al. Bases moleculares de la resistencia
a meticilina en Staphylococcus aureus. Rev chil infectol [Internet]. 2018
[citado 13 de diciembre de 2020];35(1):7–14. Disponible en:
https://scielo.conicyt.cl/scielo.php?script=sci_abstract&pid=S0716-10182018000100007&lng=es&nrm=iso&tlng=e
11. Chávez-Jacobo VM. La batalla contra las superbacterias: No más
antimicrobianos, no hay ESKAPE. TIP RECQB [Internet]. 2020 [citado 15 de
diciembre de 2020];23. Disponible en:
http://tip.zaragoza.unam.mx/index.php/tip/article/view/202
12. Labarca J. Hetero-resistencia en Staphylococcus aureus con
resistencia intermedia a vancomicina, ¿susceptible o resistente? Rev chil
infectol [Internet]. octubre de 2015 [citado 14 de diciembre de
2020];32(5):497–8. Disponible en:
https://scielo.conicyt.cl/scielo.php?script=sci_abstract&pid=S0716-10182015000600001&lng=es&nrm=iso&tlng=es
13. López IB, Ballesté MG, González AC, Morán RA, Hernández BP,
Valdés YND. Resistencia de Staphylococcus aureus frente a cefalosporinas en la
sepsis neonatal y puerperal. Revista Cubana de Obstetricia y Ginecología
[Internet]. 2019 [citado 13 de diciembre de 2020];45(1):1–13. Disponible en:
https://www.medigraphic.com/cgi-bin/new/resumen.cgi?IDARTICULO=91415
14. Caicedo-Ochoa EY, Urrutia-Gómez JA, Fernández-Niño DS,
Guío-Guerra SA, Méndez-Fandiño YR. Tratamiento de la bacteriemia por enterococo
resistente a vancomicina con daptomicina versus linezolid: revisión sistemática
y metanálisis. Iatreia [Internet]. 2017 [citado 15 de diciembre de
2020];30(1):5–20. Disponible en: http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_abstract&pid=S0121-07932017000100005&lng=en&nrm=iso&tlng=es
15. Carmona-Torre F, del Pozo JL. Tratamiento de las infecciones por
Staphylococcus aureus. Medicine - Programa de Formación Médica Continuada
Acreditado [Internet]. 1 de febrero de 2018 [citado 15 de diciembre de
2020];12(49):2918–23. Disponible en:
http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S030454121830026X
16. Gharsa H, Dziri R, Klibi N, Chairat S, Lozano C, Torres C,
et al. Environmental Staphylococcus aureus contamination in a Tunisian
hospital. Journal
of Chemotherapy [Internet]. 1 de noviembre de 2016 [citado 13 de diciembre de
2020];28(6):506–9. Disponible en:
https://doi.org/10.1179/1973947815Y.0000000036
17. Hernández-Orozco HG, Castañeda-Narváez JL, Garza EA la. Celulares
y riesgo de infecciones intrahospitalarias. Rev Latin Infect Pediatr
[Internet]. octubre de 2017 [citado 10 de diciembre de 2020];30(2):45–7.
Disponible en:
https://www.medigraphic.com/cgi-bin/new/resumen.cgi?IDARTICULO=74662
18. Llanos-Torres KH, Pérez-Orozco R, Málaga G. Infecciones
nosocomiales en unidades de observación de emergencia y su asociación con el
hacinamiento y la ventilación. Rev Peru Med Exp Salud Publica [Internet]. 3 de
febrero de 2021 [citado 9 de marzo de 2021];37:721–5. Disponible en:
https://www.scielosp.org/article/rpmesp/2020.v37n4/721-725/es/
19. Verea LP, Ferrer AF, Reyes YO, Miranda YP, Méndez AR. Infecciones
nosocomiales y resistencia antimicrobiana. Rev Cub Med Int Emerg [Internet].
2019 [citado 9 de marzo de 2021];18(1):1–17. Disponible en:
https://www.medigraphic.com/cgi-bin/new/resumen.cgi?IDARTICULO=87326
20. Flores Cabeza E, Sánchez Sánchez M, Añón Elizalde JM, Gutiérrez
Melón C. Infecciones relacionadas con la asistencia sanitaria (nosocomiales).
Medicine - Programa de Formación Médica Continuada Acreditado [Internet]. 1 de
abril de 2018 [citado 9 de marzo de 2021];12(52):3076–84. Disponible en:
https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0304541218300635
21. Ferreira AM, Andrade D de, Rigotti MA, Almeida MTG de, Guerra
OG, Santos AG dos. Evaluación de la desinfección de superficies hospitalarias por
diferentes métodos de monitorización1. Rev Latino-Am Enfermagem [Internet].
junio de 2015 [citado 3 de junio de 2021];23:466–74. Disponible en: https://www.scielo.br/j/rlae/a/zTbWrRD36PksLqLWVytnPWh/?lang=es
22. Chávez-Vivas M, Martínez A del C, Esparza-Mantilla M,
Chávez-Vivas M, Martínez A del C, Esparza-Mantilla M. CARACTERIZACIÓN DE
Staphylococcus aureus OBTENIDO DEL AMBIENTE HOSPITALARIO Y DEL PERSONAL DE
SALUD EN UN HOSPITAL DE LA CIUDAD DE CALI. Biosalud [Internet]. diciembre de
2017 [citado 8 de mayo de 2021];16(2):22–33. Disponible en:
http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_abstract&pid=S1657-95502017000200022&lng=en&nrm=iso&tlng=es
23. Andrade T C, Orellana B P. Frecuencia y susceptibilidad a
penicilina y meticilina de aislamientos ambientales de Staphylococcus aureus en
un hospital de Cuenca. 1 de diciembre de 2019 [citado 3 de junio de 2021];
Disponible en: https://zenodo.org/record/3406805
24. Hamdan A, González-García S, Bustos Martinez J. Identificación de
Staphylococcus aureus utilizando como marcadores los genes nucA y femB.
Ciencias Clínicas. 1 de marzo de 2016;16.
25. gaceta_ram2018.pdf [Internet]. [citado 6 de julio de 2021].
Disponible en:
https://www.salud.gob.ec/wp-content/uploads/2019/08/gaceta_ram2018.pdf
26. Hernández-Orozco HG, Castañeda-Narváez JL. Celulares y riesgo de
infecciones intrahospitalarias. Revi Latino de InfeC Ped [Internet]. 30:3.
Disponible en: https://www.medigraphic.com/pdfs/infectologia/lip-2017/lip172a.pdf
27. Cabrera Tello M, Chávez Vivas M. Patógenos de importancia
clínica - Caracterización fenotípica y molecular de Staphylococcus aureus
aislado de superficies del ambiente hospitalario de la red pública y privada en
la ciudad de Cali. En Universidad Santiago de cali; 2018 [citado 8 de mayo de
2021]. Disponible en: https://repository.usc.edu.co/handle/20.500.12421/932
28. Rivera-Jacinto M, Rodríguez-Ulloa C, Huayán-Dávila G. Frecuencia
de aislamientos ambientales de Staphylococcus aureus y su actividad
beta-lactamasa en un hospital de Cajamarca, Perú. Infectio [Internet]. 1 de
septiembre de 2009 [citado 14 de junio de 2021];13(3):192–5. Disponible en:
https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0123939209701493
29. Mukhiya RK, Shrestha A, Rai SK, Panta K, Singh RN, Rai G,
et al. Prevalence of Methicillin-Resistant Staphylococcus aureus in
Hospitals of Kathmandu Valley. Nepal Journal of Science and Technology
[Internet]. 2012 [citado 14 de junio de 2021];13(2):185–90. Disponible en:
https://www.nepjol.info/index.php/NJST/article/view/7734
30. Odoya M, Ohenhen R, Adias T, Stanley O, Ojusin G. An Overview of
the Distribution of Staphylococcus aureus in the hospital Environment. 1 de julio de
2015;9:31–3.
31. Glowacki CM, Sales WB, Pereira-Maciel RA, Vasco JF de M.
IDENTIFICAÇÃO DE MICRORGANISMOS ISOLADOS DE SUPERFÍCIES INANIMADAS DE CONTATO
DE UMA UNIDADE DE PRONTO ATENDIMENTO. Anais do EVINCI - UniBrasil [Internet].
2015 [citado 20 de junio de 2021];1(4):152–61. Disponible en:
https://portaldeperiodicos.unibrasil.com.br/index.php/anaisevinci/article/view/863
32. Price JR, Cole K, Bexley A, Kostiou V, Eyre DW, Golubchik T,
et al. Transmission
of Staphylococcus aureus between health-care workers, the
environment, and patients in an intensive care unit: a longitudinal cohort
study based on whole-genome sequencing. The Lancet Infectious Diseases
[Internet]. 1 de febrero de 2017 [citado 20 de junio de 2021];17(2):207–14.
Disponible en:
https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S1473309916304133
33. Izzeddin N, Rodríguez GA, Medina L, González L. Evaluación
microbiológica de aire y superficies en quirófano de un centro de salud
público. Salus.
2017;21(3):18–23.
34. Al-Abdli NE, Baiu SH, Al-Abdli NE, Baiu SH. Isolation of MRSA
Strains from Hospital Environment in Benghazi City, Libya [Internet]. Vol. 4.
2016; Disponible en: 10.12691/ajidm-4-2-4.
35. Creamer E, Shore AC, Deasy EC, Galvin S, Dolan A, Walley N,
et al. Air and surface contamination patterns of meticillin-resistant
Staphylococcus aureus on eight acute hospital wards. Journal of Hospital
Infection [Internet]. 1 de marzo de 2014 [citado 26 de junio de
2021];86(3):201–8. Disponible en:
https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0195670114000048
36. Tagoe DN, Desbordes KK.
Investigating potential sources of transmission of healthcare-associated
infections in a regional hospital, Ghana. International Journal of Applied and Basic
Medical Research [Internet]. 1 de enero de 2012 [citado 15 de junio de
2021];2(1):20. Disponible en:
https://www.ijabmr.org/article.asp?issn=2229-516X;year=2012;volume=2;issue=1;spage=20;epage=24;aulast=Tagoe;type=0
